СОХРАННОСТЬ И ПРИЖИВЛЯЕМОСТЬ ЗАМОРОЖЕННО-ОТТАЯННЫХ ЭМБРИОНОВ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА ПРИ ИСПОЛЬЗОВАНИИ L-КАРНИТИНА В СОСТАВЕ СРЕДЫ ДЛЯ ИЗВЛЕЧЕНИЯ ЗАРОДЫШЕЙ

Одним из важнейших этапов практического применения трансплантации эмбрионов является возможность длительного сохранения зародышей вне организма в глубокозамороженном состоянии с целью их наиболее эффективного использования для получения потомков от высокоценных животных в программах селекции и разведения крупного рогатого скота. В связи с этим использование в эмбриотрансплантации биологически активных соединений, обладающих липолитическим действием, представляет интерес с точки зрения изучения возможности снижения влияния негативных факторов внешней среды и воздействия низких температур на биоматериал в процессе его нахождения вне организма. В статье представлены материалы исследований влияния L-карнитина в составе среды для извлечения зародышей на сохранность и приживляемость заморожено-оттаянных эмбрионов крупного рогатого скота. Установлено, что применение L-карнитина в вымывной среде не приводило к существенным изменениям в морфологии эмбрионов после их оттаивания по сравнению с контролем. При добавлении в среду для извлечения эмбрионов у коров-доноров липолитического вещества L-карнитина обозначилась тенденция качественного улучшения заморожено-оттаянных зародышей и повышения результативности пересадок дефростированного эмбриоматериала.

1. Lane, M. Addition of ascorbate during cryopreservation stimulates subsequent embryo development / M. Lane, J. M. Maybach, D. K. Gardner// Human Reproduction. – 2002. – Vol. 17(10). – P. 2686–2693. DOI: 10.1093/humrep/17.10.2686.

2. Is the zona pellucida an efficient barrier to viral infection? / A. Van Soom [et al.] // Reprod. Fertil. Dev. – 2010. – Vol. 22(1). – P. 21–31. DOI: 10.1071/RD09230

3. Hershlag, A. Effect of prefreeze assisted hatching on post thaw survival of mouse embryos / A. Hershlag, H. L. Feng // Fertility and Sterility. – 2005. – Vol. 84. – P. 1752–1754. DOI: 10.1016/j.fertnstert.2005.05.065.

4. A prospective randomized study to assess the benefit of partial zona pellucida digestion before frozen-thawed embryo transfers / C. Sifer [et al.] // Hum. Reprod. – 2006. – Vol. 21(9). – P. 2384–2389. DOI: 10.1093/humrep/del149.

5. Application of laser-assisted zona drilling to in vitro fertilization of cryopreserved mouse oocytes with spermatozoa from a subfertile transgenic mouse / M. Anzai [et al.] // J. Reprod. Dev. – 2006. – Vol. 52(5). – P. 601–606. DOI: 10.1262/jrd.18040.

6. Montag, M. Use of a laser to evaluate zona pellucida hardness at different stages of mouse embryonic development in vitro and in vivo / M. Montag, B. Kol, H. van der Ven // J. Assist. Reprod. Genet. – 2000. – Vol. 17(3). – P. 178–181. doi: 10.1023/a:1017257824215.

7. Effect of zona incision by piezo-micromanipulator (ZIP) on in vitro fertilization in 21 transgenic mice lines / Y. Kawase [et al.] // Exp. Anim. 2009. – Vol. 58(4). – P. 415–419. DOI: 10.1538/expanim.58.415.

8. Effect of delipidant agents during in vitro culture on the development, lipid content, gene expression, and cryotolerance of bovine embryos./ O. Dias [et al.] // Reproduction in Domestic Animals. – 2020. – Vol. 55(1). – P. 11-20. DOI: 10.1111/rda.13579.

9. Crucial surviving aspects for vitrified in vitro-produced bovine embryos / M. J. Sudano [et al.] // Zygote. – 2014. – Vol. 22. – P. 124-31. DOI: 10.1017/S0967199412000196.

10. Enhancement of lipid metabolism with L-carnitine during in vitro maturation improves nuclear maturation and cleavage ability of follicular porcine oocytes / T. Somfai [et al.] // Reprod. Fertil. Dev. – 2011. – Vol. 23. – P. 912–920. DOI: 10.1071/RD10339.

11. Yamada, T. Beneficial effects of acetyl-L-carnitine treatment during IVM on post-fertilization development of bovine oocytes in vitro / T. Yamada, H. Imai, M. Yamada // Reprod. Fertil. Dev. – 2006. – Vol. 18. – P. 280–281. DOI: 10.1071/RDv18n2Ab346.

12. Beta-oxidation is essential for mouse oocyte developmental competence and early embryo development / K. R. Dunning [et al.] // Biol. Reprod. – 2010. – Vol. 83. – P. 909–918. DOI: 10.1095/biolreprod.110.084145.

13. Gülçin, I. Antioxidant and antiradical activities of L-carnitine / I. Gülçin, // Life Sci. – 2006. – Vol. 78. – P. 803–811. DOI: 10.1016/j.lfs.2005.05.103.

14. Pillich, R. T. Reduction of apoptosis through the mitochondrial pathway by the administration of acetyl-Lcarnitine to mouse fibroblasts in culture / R. T. Pillich, G. Scarsella, G. Risuleo // Exp. Cell Res. – 2005. – Vol. 306. – P. 1–8. DOI: 10.1016/j.yexcr.2005.01.019.

15. L-carnitine attenuates oxidant injury in HK-2 cells via ROS–mitochondria pathway / J. Ye [et al.] // Regul. Pept. – 2010. – Vol. 161. – P. 58–66. DOI: 10.1016/j.regpep.2009.12.024.

16. L-carnitine enhances oocyte maturation and development of parthenogenetic embryos in pigs / G. Q. Wu [et al.] // Theriogenology. – 2011. – Vol. 76. – P. 785–793. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2011.04.011.

17. Supplementation of maturation medium with L-carnitine improves cryo-tolerance of bovine in vitro matured oocytes / V. Chankitisakul [et al.] // Theriogenology. – 2013. – Vol. 79(4). – P. 590–598. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2012.11.011.

18. Effect of L-carnitine on maturation, cryo-tolerance and embryo developmental competence of bovine oocytes / T. Phongnimitr [et al.] // Animal Science Journal. – 2013. – Vol. 84(11). – P. 719–725. DOI: 10.1111/asj.12067.

19. Усовершенствованная технология трансплантации эмбрионов в молочном и мясном скотоводстве : методические рекомендации / А. И. Будевич [и др.]. – Жодино, 2010. – 17 с.